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瀏覽:- 發(fā)布日期:2025-06-03 11:14:01【

新污染物是指具有生物毒性、環(huán)境持久性和生物累積性等特征,對生態(tài)環(huán)境或人體健康存在較大風險,但尚未納入環(huán)境管理,或者現(xiàn)有管理措施不足以應(yīng)對的有毒有害化學物質(zhì)。2022年5月,國務(wù)院印發(fā)了《新污染物治理行動方案》,該方案指出,目前國內(nèi)外廣泛關(guān)注的新污染物主要有三大類:一是持久性有機污染物;二是內(nèi)分泌干擾物;三是抗生素。六溴環(huán)十二烷(HBCDs)和四溴雙酚A(TBBPA)屬于持久性有機污染物,近年來作為新污染物受到廣泛關(guān)注[1-2]。這兩類物質(zhì)是常見的溴代阻燃劑,因其優(yōu)良的阻燃性能,被廣泛應(yīng)用于建筑材料、車輛、紡織品和家用電器等產(chǎn)品的生產(chǎn)與加工過程中[3-4]。已有研究證實HBCDs和TBBPA具有生物富集性[5],并且對人體及哺乳動物有一定毒性[6-7]。國內(nèi)外研究表明,這兩類物質(zhì)可在各類環(huán)境介質(zhì)和生物體中被不同程度地檢出[8-9]。為了減少HBCDs帶來的污染,我國在2021年底全面禁止HBCDs的生產(chǎn)和使用;2023年生態(tài)環(huán)境部制定了《重點管控新污染物清單(2023年版)》,明確HBCDs屬于已淘汰類新污染物,禁止其生產(chǎn)、加工使用以及進出口。盡管目前尚無明確禁止TBBPA生產(chǎn)和使用的法規(guī),但作為新污染物,其與HBCDs性質(zhì)相似,也存在污染環(huán)境的風險。因此,為加強對這兩類物質(zhì)的風險管控,提高新污染物治理能力,建立針對這兩類物質(zhì)的快速、有效、可靠且經(jīng)濟的監(jiān)測方法十分必要。 

我國在HBCDs和TBBPA的監(jiān)測技術(shù)方面起步較晚,分析方法以液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10-11]為主,大多聚焦在食品、土壤和生物體中[12-13],對水體的測定研究較少。水中HBCDs和TBBPA的前處理方法主要是液液萃取法,如海洋行業(yè)標準HY/T 261—2018《海水中六溴環(huán)十二烷的測定 高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法》測定海水中的HBCDs時,使用40 mL正己烷分兩次對500 mL海水樣品進行液液萃取;文獻[10]使用100 mL二氯甲烷分兩次液液萃取水中的HBCDs和TBBPA;文獻[14]使用100 mL二氯甲烷分兩次液液萃取水中的HBCDs,這些方法均需要消耗大量的有機溶劑。同時,大部分監(jiān)測方法會在樣品采集后直接過濾除去水樣中的懸浮物[14-17],但并未考慮懸浮物中是否含有HBCDs和TBBPA,造成測定結(jié)果偏低。因此,本工作采用固相萃取-液相色譜-串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜法同時測定水中3種HBCDs(包括α-HBCD、β-HBCD、γ-HBCD)和TBBPA的含量,將水樣中的懸浮物和水樣作為一個整體,對樣品的前處理和儀器工作條件進行了優(yōu)化,可滿足大批量水樣的監(jiān)測分析要求。 

1290 UPLC-6460 QQQ MSD型高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀;Auto Vap S8型全自動定量濃縮儀;Visiprep DL24位型固相萃取裝置;ChromP固相萃取柱(500 mg/6 mL);HLB固相萃取柱(500 mg/6 mL);GCB固相萃取柱(500 mg/6 mL);氨基柱(500 mg/6 mL)。 

3種HBCDs混合標準溶液:α-HBCD、β-HBCD、γ-HBCD的質(zhì)量濃度均為100.0 mg·L−1,溶劑為甲醇,編號1ST80883-100M。 

TBBPA標準溶液:100.0 mg·L−1,溶劑為甲醇,編號1ST8713-100M。 

碳同位素標記的α-HBCD(13C12-α-HBCD)標準溶液:50.0 mg·L−1,溶劑為甲苯,編號CLM-7922-S。 

碳同位素標記的β-HBCD(13C12-β-HBCD)標準溶液:50.0 mg·L−1,溶劑為甲苯,編號CLM-7923-S。 

碳同位素標記的γ-HBCD(13C12-γ-HBCD)標準溶液:50.0 mg·L−1,溶劑為甲苯,編號CLM-7924-S。 

碳同位素標記的TBBPA(13C12-TBBPA)標準溶液:50.0 mg·L−1,溶劑為甲醇,編號CLM-4694-S。 

氘代同位素標記的α-HBCD(α-HBCD-d18)標準溶液:50.0 mg·L−1,溶劑為甲苯,編號DaHBCD。 

混合標準中間液:分別取適量的3種HBCDs混合標準溶液和TBBPA標準溶液,用甲醇稀釋并定容,配制成質(zhì)量濃度為10.0 mg·L−1的混合標準中間液。 

提取內(nèi)標溶液:分別取適量的13C12-α-HBCD標準溶液、13C12-β-HBCD標準溶液、13C12-γ-HBCD標準溶液和13C12-TBBPA標準溶液,用甲醇稀釋并定容,配制成質(zhì)量濃度為1.00 mg·L−1的提取內(nèi)標溶液。提取內(nèi)標溶液用于修正樣品在前處理過程中產(chǎn)生的誤差。 

進樣內(nèi)標溶液:取適量的α-HBCD-d18標準溶液,用甲醇稀釋并定容,配制成質(zhì)量濃度為1.00 mg·L−1的進樣內(nèi)標溶液。進樣內(nèi)標溶液用于修正儀器進樣過程中產(chǎn)生的誤差。 

混合標準溶液系列:取適量的混合標準中間液,用甲醇逐級稀釋,加入適量的提取內(nèi)標溶液和進樣內(nèi)標溶液,配制成α-HBCD、β-HBCD、γ-HBCD、TBBPA的質(zhì)量濃度為2.00,5.00,10.0,20.0,50.0,100,200 μg·L−1,提取內(nèi)標和進樣內(nèi)標的質(zhì)量濃度為20.0 μg·L−1的混合標準溶液系列。 

甲醇、乙腈均為色譜純;丙酮、二氯甲烷均為農(nóng)殘級;試驗用水為超純水。 

Extend C18色譜柱(100 mm×2.1 mm,3.5 μm);流量0.3 mL·min−1;進樣量10.0 μL;柱溫35 ℃;流動相A為水,B為體積比1∶1的甲醇-乙腈混合溶液。梯度洗脫程序:0~3 min,B由30%升至80%;3~9 min,B由80%升至93%;9~10 min,B由93%降至30%,保持2 min。 

電噴霧離子(ESI)源,負離子(ESI)模式掃描;干燥氣溫度320 ℃,干燥氣流量6 L·min−1;霧化氣壓力241.3 kPa;鞘氣溫度340 ℃,鞘氣流量11 L·min−1;毛細管電壓1 500 V;噴嘴電壓2 000 V;多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式。其他質(zhì)譜參數(shù)見表1。 

表  1  質(zhì)譜參數(shù)
Table  1.  MS parameters
化合物 保留時間/min 定量離子對質(zhì)荷比(m/z 定性離子對m/z 錐孔電壓/V 碰撞能量/eV
TBBPA 4.979 542.7/417.9 542.7/78.9,542.7/291.0 200 46,67,40
13C12-TBBPA 4.984 554.7/430.8 554.7/296.7 200 40,40
α-HBCD-d18 6.556 657.7/78.9 657.7/81.0 80 21,21
α-HBCD 6.645 640.6/79.0 640.6/81.0 80 17,10
13C12-α-HBCD 6.651 652.6/79.0 652.6/81.0 80 11,21
β-HBCD 7.063 640.6/79.0 640.6/81.0 80 17,10
13C12-β-HBCD 7.069 652.6/79.0 652.6/81.0 80 11,21
γ-HBCD 7.749 640.6/79.0 640.6/81.0 80 17,10
13C12-γ-HBCD 7.755 652.6/79.0 652.6/81.0 80 11,21

按照HJ 91.1—2019《污水監(jiān)測技術(shù)規(guī)范》的相關(guān)要求,用棕色采樣瓶采集樣品,確保滿瓶采集。在每升水樣中加入80 mg硫代硫酸鈉和5 mL甲醇,混勻,于4 ℃以下避光運輸、保存,14 d內(nèi)完成樣品前處理,30 d內(nèi)完成分析。 

取1 L樣品,加入20.0 μL提取內(nèi)標溶液,混勻,抽濾過0.45 μm濾膜,收集濾液。將抽濾后的濾膜剪碎置于15 mL離心管中,加入5 mL丙酮,超聲提取20 min,過0.45 μm聚四氟乙烯(PTFE)針頭式過濾器,該濾液與抽濾后的濾液合并,過ChromP固相萃取柱(依次用二氯甲烷、丙酮、甲醇和水各10 mL活化),氮氣吹掃固相萃取柱10 min,用15.0 mL體積比9∶1的二氯甲烷-丙酮混合溶液洗脫,收集洗脫液置于濃縮儀中,氮吹至近干,殘余物用甲醇溶解并定容至1.0 mL,加入20.0 μL進樣內(nèi)標溶液,混勻,過0.22 μm PTFE針頭式過濾器,按照儀器工作條件測定。 

固相萃取法具有操作簡單、溶劑消耗少,能同時完成萃取和凈化,并可實現(xiàn)自動化操作等優(yōu)勢。常用于樣品萃取和凈化的固相萃取柱有鍵合硅膠固相萃取柱(如氨基柱)、無機固相萃取柱(如GCB柱)、高聚物固相萃取柱(如HLB柱、ChromP柱),試驗考察了上述4種固相萃取柱對各目標化合物萃取效果的影響,結(jié)果見圖1。 

圖  1  固相萃取柱對目標化合物回收率的影響
Figure  1.  Effect of solid phase extraction columns on recoveries of target compounds

圖1可知:采用GCB柱時,HBCDs和TBBPA回收率基本為0,可能由于GCB柱對含有苯環(huán)官能團的目標化合物(如TBBPA)具有較強的吸附能力[1218],HBCDs雖不含苯環(huán)但與TBBPA結(jié)構(gòu)相似,導(dǎo)致這兩類目標化合物難以被洗脫;采用氨基柱時,TBBPA回收率基本為0,可能由于TBBPA存在兩個酚羥基,屬于離子型有機污染物,其pKa1為7.5,在中性環(huán)境中,TBBPA部分會以陰離子的形式存在,且TBBPA的極性大于HBCDs的,導(dǎo)致其在氨基柱上的保留能力過強,難以被洗脫;采用HLB柱和ChromP柱時,4種目標化合物均能被萃取,可能由于HLB柱和ChromP柱填料均為親水親脂型聚合物,可萃取的化合物極性范圍較寬,而采用ChromP柱的回收率均高于HLB柱的,可能因為ChromP柱的填料是苯乙烯-二乙烯基苯,更適合萃取芳香型化合物[19-20]。因此,試驗選擇的固相萃取柱為ChromP柱。 

試驗首先嘗試以甲醇為洗脫溶劑,考察了甲醇用量對各目標化合物回收率的影響。結(jié)果顯示:當甲醇用量為30 mL時,TBBPA的回收率為80.0%,但HBCDs的回收率僅為50.0%;繼續(xù)增大甲醇用量到50 mL時,HBCDs的回收率仍只有60.0%,可能由于HBCDs是非極性化合物,甲醇的洗脫能力不足。因此,試驗選擇洗脫能力更大的溶劑,包括丙酮、二氯甲烷、正己烷及其混合溶液,考察了不同洗脫溶劑(體積比9∶1的正己烷-丙酮混合溶液、體積比1∶1的正己烷-丙酮混合溶液、體積比9∶1的二氯甲烷-丙酮混合溶液、體積比1∶1的二氯甲烷-丙酮混合溶液)對4種目標化合物洗脫效果的影響,結(jié)果見圖2。 

圖  2  洗脫溶劑對目標化合物回收率的影響
Figure  2.  Effect of elution solvents on recoveries of target compounds

圖2可知:采用體積比1∶1的正己烷-丙酮混合溶液作為洗脫溶劑時,3種HBCDs的回收率較差;采用其余3種混合溶液作為洗脫溶劑時,4種目標化合物的回收率均大于80.0%。考慮到二氯甲烷的揮發(fā)性優(yōu)于正己烷的,且采用體積比9∶1的二氯甲烷-丙酮混合溶液作為洗脫溶劑時,4種目標化合物的回收率最高,試驗選擇的洗脫溶劑為體積比9∶1的二氯甲烷-丙酮混合溶液。 

試驗進一步考察了不同用量(1.5,3.0,4.5,6.0,7.5,9.0,10.5,12.0,13.5,15.0 mL)洗脫溶劑對4種目標化合物回收率的影響。結(jié)果顯示,當洗脫溶劑用量為10.5 mL時,4種目標化合物的回收率基本達到最大,繼續(xù)增大洗脫溶劑用量并不能提高目標化合物的回收率。考慮到不同批次固相萃取柱的差異,試驗選擇的洗脫溶劑用量為15.0 mL。 

由于TBBPA存在兩個酚羥基,溶液酸度會影響TBBPA的存在狀態(tài),試驗以空白加標樣品(加標量為5.0 ng·L−1)為研究對象,考察了不同溶液酸度(pH 1,2,4,7,8)對4種目標化合物回收率的影響。結(jié)果顯示:當溶液pH為1時,4種目標化合物的回收率均較低;當溶液pH為2~8時,4種目標化合物的回收率沒有明顯差異,可能與ChromP柱的填料為親水親脂型聚合物有關(guān)。為了簡化操作,提高樣品前處理效率,試驗不額外調(diào)節(jié)溶液酸度。 

試驗以加標地表水(加標量為20 ng·L−1)為研究對象,分別對經(jīng)0.45 μm濾膜抽濾后的水樣、抽濾后的濾膜(水樣中懸浮物以顆粒物形式吸附在濾膜上)進行前處理,考察了4種目標化合物在水中和顆粒物中的分布狀況。結(jié)果顯示,TBBPA在抽濾后的濾膜上基本未被檢出,而HBCDs有近33%(質(zhì)量分數(shù))分布在顆粒物中,可能與目標化合物的性質(zhì)有關(guān),HBCDs是非極性化合物,而TBBPA具有一定極性且存在兩個酚羥基,相較于HBCDs,TBBPA在水中具有更好的溶解性。因此,測定水樣時需對抽濾后的濾膜進行提取。 

超聲是固體樣品常用的提取方法,利用“空化效應(yīng)”產(chǎn)生的沖擊波,使溶液湍流加快,加速熱傳遞并與溶質(zhì)分散,從而增強提取溶劑與水樣間的質(zhì)量傳輸,提高提取效率。試驗固定超聲提取時間20 min,提取溶劑5 mL,考察了不同提取溶劑(甲醇、丙酮和二氯甲烷)對抽濾后的濾膜中HBCDs提取效率的影響。結(jié)果顯示,采用丙酮和二氯甲烷提取時,HBCDs的回收率相差不大,但采用甲醇提取時,回收率較低,這可能與HBCDs的非極性性質(zhì)有關(guān)。考慮到超聲提取液中可能含有基質(zhì)干擾物質(zhì),需對超聲提取液進行固相萃取凈化處理,而二氯甲烷與水不互溶,試驗選擇丙酮作為提取溶劑。 

研究表明,流動相中乙腈有利于β-HBCD和γ-HBCD的分離,甲醇有利于α-HBCD和β-HBCD的分離[21]。試驗考察了流動相體系中的不同有機相(甲醇、乙腈、體積比1∶1的甲醇-乙腈混合溶液)對3種HBCDs分離效果的影響。結(jié)果顯示:當有機相為甲醇時,β-HBCD和γ-HBCD色譜峰的分離度較低;當有機相為乙腈時,α-HBCD和β-HBCD色譜峰的分離度較低;當有機相為體積比1∶1的甲醇-乙腈混合溶液時,3種HBCDs色譜峰的分離效果最好,且與基線分離。因此,試驗選擇體積比1∶1的甲醇-乙腈混合溶液作為流動相體系中的有機相。 

增大進樣量能提高方法的靈敏度,但進樣量過大可能影響目標化合物的分離度和峰形,進而影響目標化合物的定性定量。試驗以100 μg·L−1混合標準溶液為研究對象,考察了進樣量為1.0~20.0 μL時4種目標化合物峰形的變化情況。結(jié)果顯示:當進樣量由1.0 μL增大至10.0 μL時,4種目標化合物的峰形無明顯變化,峰響應(yīng)強度則逐漸增強;當進樣量增大至20.0 μL時,4種目標化合物均出現(xiàn)不同程度的前展現(xiàn)象,其中TBBPA的峰形變化最為明顯。這可能因為混合標準溶液的溶劑為甲醇,而初始流動相僅含30%(體積分數(shù))有機相,當進樣量較小時,目標化合物在色譜柱中的擴散尚可在較短時間內(nèi)完成,不影響目標化合物的峰形,而隨著進樣量逐漸增大,目標化合物總量逐漸增大,當進樣量增大到一定量時,目標化合物在色譜柱前端無法充分擴散,進而導(dǎo)致峰形發(fā)生扭曲。為了保證色譜峰峰形,同時得到最佳的檢出限,試驗選擇的進樣量為10.0 μL,得到的MRM色譜圖見圖3。 

圖  3  100 μg·L1混合標準溶液的MRM色譜圖
Figure  3.  MRM chromatogram of 100 μg·L−1 mixed standard solution

按照儀器工作條件測定混合標準溶液系列,以目標化合物與提取內(nèi)標的質(zhì)量濃度之比為橫坐標,以目標化合物與提取內(nèi)標的響應(yīng)強度之比為縱坐標繪制標準曲線。結(jié)果顯示,4種目標化合物標準曲線的線性范圍均為2.00~200 μg·L−1,線性回歸方程、相關(guān)系數(shù)見表2。 

表  2  線性參數(shù)、檢出限和測定下限
Table  2.  Linearity parameters, detection limits and lower limits of determination
化合物 線性回歸方程 相關(guān)系數(shù) 檢出限ρ/(ng·L−1 測定下限ρ/(ng·L−1
α-HBCD y=1.043x−2.204×10−2 0.999 4 0.5 2.0
β-HBCD y=9.928×10−1x−4.762×10−3 0.999 9 0.6 2.4
γ-HBCD y=9.670×10−1x+6.303×10−3 0.999 9 0.7 2.8
TBBPA y=1.551x+5.529×10−2 0.999 6 0.8 3.2

平行配制7份空白加標樣品(加標量為2.00 ng·L−1)并進行測定,依據(jù)HJ 168—2020《環(huán)境監(jiān)測分析方法標準制訂技術(shù)導(dǎo)則》計算標準偏差s,以3.143s計算檢出限,以4倍檢出限計算測定下限,結(jié)果見表2。 

對地表水樣品進行3個濃度水平的加標回收試驗,每個濃度水平重復(fù)測定6次,計算回收率和測定值的相對標準偏差(RSD),結(jié)果見表3。 

化合物 加標量2.00 ng·L−1 加標量20.0 ng·L−1 加標量90.0 ng·L−1
回收率/% RSD/% 回收率/% RSD/% 回收率/% RSD/%
α-HBCD 112 15 113 4.0 100 3.5
β-HBCD 118 8.6 124 5.7 103 3.3
γ-HBCD 88.4 11 129 2.3 103 2.9
TBBPA 98.1 14 91.6 5.7 97.7 7.1

表3可知,4種目標化合物的回收率為88.4%~129%,測定值的RSD為2.3%~15%,表明該方法準確度和精密度較好,可以滿足痕量分析的需求。 

將本方法與現(xiàn)有的分析方法進行比對,結(jié)果見表4。 

表  4  方法比對結(jié)果
Table  4.  Results of method comparison
化合物 前處理方法 檢出限ρ/(ng·L−1 回收率/% RSD/% 文獻
HBCDs、TBBPA 二氯甲烷液液萃取,硅膠固相萃取小柱凈化 0.3~0.5 91.8~117 3.1~12 [10]
HBCDs 二氯甲烷液液萃取,硅膠固相萃取小柱凈化 0.5~0.6 84.0~88.0 <6.5 [14]
HBCDs 液液微萃取 85~157 71.0~102 5.3~9.7 [16]
HBCDs、TBBPA 在線固相萃取 3~14 83.2~114 7.6~15 [17]
TBBPA 固相萃取 40 82.0~99.0 <5.0 [22]
TBBPA 液液萃取或固相萃取 2 64.3~118 <7.1 [23]
HBCDs 正己烷萃取,硅膠柱凈化 2 70.0~120 <9.0 [24]
HBCDs、TBBPA 超聲提取,固相萃取 0.5~0.8 88.4~129 2.3~15 本方法

表4可知:樣品的前處理方法主要為液液萃取或固相萃取。采用固相萃取時,由于水樣中含有一定量的懸浮物,一般會使用0.45 μm濾膜對樣品進行預(yù)處理,而本方法顯示懸浮物中存在一定量的HBCDs,因此測定水樣時需考慮懸浮物中HBCDs的含量;采用液液萃取時,雖然萃取了懸浮物中的目標化合物,但需要消耗較多的有機溶劑。本方法將水樣中的懸浮物和水樣作為一個整體,既萃取了水樣和懸浮物中的目標化合物,又大幅減少了有機溶劑的消耗,檢出限等方面優(yōu)于部分文獻,能滿足水樣中HBCDs和TBBPA的測定需求。 

按照試驗方法分析在湖北省內(nèi)采集的32個地表水樣品和2個廢水樣品。結(jié)果顯示:在地表水樣品中,29個樣品中均未檢出4種目標化合物,1個樣品中檢出TBBPA,檢出量為1.4 ng·L−1,1個樣品中檢出3種HBCDs,檢出量為0.5~1.7 ng·L−1,1個樣品中檢出α-HBCD、TBBPA,檢出量分別為1.9,1.4 ng·L−1;在廢水樣品中,2個樣品中均檢出TBBPA,檢出量分別為1.4,17.8 ng·L−1。檢測結(jié)果與文獻[25-26]基本一致,說明湖北省的部分水體已存在輕微的HBCDs和TBBPA污染。 

本工作采用固相萃取-液相色譜-串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜法同時測定水中3種HBCDs和TBBPA的含量。該方法前處理簡便高效、可自動化,靈敏度、精密度和準確度較高,可滿足水樣中HBCDs和TBBPA的測定。




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